Noticias

Jan 27, 2024

Riesgo potencial de SARS

Scientific Reports volumen 12, Número de artículo: 14994 (2022) Cita este artículo 5331 Accesos 83 Detalles de Altmetric Metrics El riesgo de infección por SARS-CoV-2 cuando las personas manipulan ropa de cama es incierto. Nosotros

Scientific Reports volumen 12, número de artículo: 14994 (2022) Citar este artículo

5331 Accesos

83 altmétrico

Detalles de métricas

El riesgo de infección por SARS-CoV-2 cuando las personas manipulan ropa de cama es incierto. Examinamos la presencia de SARS-CoV-2 en la ropa de cama, en el aire y en el equipo de protección personal (EPP) para evaluar el riesgo potencial de infección entre las personas que manipulan la ropa de cama utilizada por personas infectadas con el SARS-CoV-2. En este estudio participaron en 2020 pacientes de un hospital y un centro de alojamiento que dieron positivo por SARS-CoV-2. Muestras de ropa de cama antes del lavado o desinfección, agua de enjuague después del lavado o desinfección, aire en el lugar de trabajo del hospital y de un centro de alojamiento, y el EPP usado por las personas que manipulan ropa de cama se analizó para detectar ARN del SARS-CoV-2 y virus viables. Entre 700 muestras de 13 participantes infectados por SARS-CoV-2 y su entorno circundante, se detectó ARN del SARS-CoV-2 en el 14 % (52/362) de la ropa de cama utilizada por los pacientes con COVID-19 (valor umbral del ciclo [Ct] : 33–40). Se detectó ARN del SARS-CoV-2 en el 8% (2/26) del agua de enjuague después del lavado o desinfección, en el 15% (16/104) de las muestras de aire en el espacio de trabajo y en el 10% (5/52) de las batas. usados ​​por personas que manipulan ropa, todos con valores de Ct elevados (> 36). No se aisló SARS-CoV-2 de ninguna muestra. El riesgo potencial de infección por SARS-CoV-2 al manipular la ropa de cama utilizada por personas infectadas por SARS-CoV-2 existe, pero parece que se indica a continuación.

La pandemia de enfermedad por coronavirus (COVID-19) ha amenazado la salud pública de formas sin precedentes en el siglo XXI. Según la Organización Mundial de la Salud, hasta enero de 2022, 289 millones de personas habían sido infectadas y más de 5,4 millones habían muerto a causa de la COVID-191. El coronavirus 2 del síndrome respiratorio agudo severo (SARS-CoV-2), que causa el COVID-19, se transmite a través de gotitas, aerosoles y contacto2. Se informa que la duración media de la eliminación del ARN viral desde el tracto respiratorio superior de los pacientes con COVID-19 es de 17 días, y la transmisibilidad puede durar aproximadamente 9 días después del inicio de la infección3. El SARS-CoV-2 que se adhiere a superficies ambientales es infeccioso durante aproximadamente 3 días y existe riesgo de transmisión por contacto desde superficies ambientales contaminadas4,5,6,7. Un estudio de un brote de COVID-19 en un crucero detectó ARN del SARS-CoV-2 en la ropa de cama y otras prendas utilizadas por personas infectadas8. De manera similar, varios estudios posteriores observaron que el ARN viral puede aislarse de fundas de almohadas, sábanas y otros artículos de cama utilizados por los pacientes9,10,11. Actualmente, no existen prácticas estándar sobre cómo manipular y limpiar de forma segura la ropa de cama utilizada por personas infectadas con SARS-CoV-2. Varias autoridades recomendaron que se use agua lo más tibia posible para lavar la ropa de un paciente con COVID-1912,13,14,15, y existe un informe que sugiere que los surfactantes utilizados en detergentes y suavizantes pueden desactivar el virus16. Sin embargo, la evidencia sobre el riesgo de infección por SARS-CoV-2 al manipular la ropa de cama utilizada por pacientes con COVID-19 es limitada. Por lo tanto, examinamos la presencia de SARS-CoV-2 en la ropa de cama, en el agua de enjuague después del lavado o desinfección, en el aire y en el equipo de protección personal (EPP) después de los cambios de ropa de cama para evaluar el riesgo potencial de propagación viral entre las personas que manipulan y lavan ropa de cama utilizada por los participantes infectados por SARS-CoV-2.

Este estudio fue diseñado como un ensayo controlado aleatorio, abierto. Los participantes fueron registrados del 16 de septiembre de 2020 al 19 de noviembre de 2020 en un hospital que admitía pacientes sintomáticos de COVID-19 y en un centro de alojamiento que albergaba a personas asintomáticas infectadas con SARS-CoV-2. Los pacientes sintomáticos de COVID-19 o con comorbilidades fueron admitidos en el hospital después de confirmar un resultado positivo de la prueba de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) de su muestra nasofaríngea. Las personas asintomáticas infectadas con SARS-CoV-2 fueron enviadas al centro de alojamiento después de un resultado positivo en la prueba de antígenos. La prueba de antígeno se realizó en la estación de cuarentena de un aeropuerto cercano. En el hospital, los participantes permanecieron en salas de presión negativa (5,5 cambios de aire por hora; área, 14,5 m2; y volumen, 36 m3). En el alojamiento, los participantes se alojaron en habitaciones privadas (se desconocen los cambios de aire por hora; superficie, 12 m2; y volumen, 30 m3).

La presencia de ARN del SARS-CoV-2 en la ropa de cama antes y después del lavado o desinfección se evaluó el día en que los participantes ingresaron al hospital o centro (día 1) y el día 3 después del ingreso. Además, para evaluar el riesgo potencial de infección entre las personas que manipulan la ropa de cama en las habitaciones donde se hospedaban los pacientes con COVID-19, se tomaron muestras del aire y del EPP y se analizaron para detectar la presencia de ARN del SARS-CoV-2.

A los participantes se les asignó uno de los cinco tipos de métodos de lavado y desinfección que se muestran a continuación para cada instalación y oportunidad de lavandería (días 1 y 3) mediante aleatorización estática simple. No se realizó cegamiento.

La ropa de cama utilizada por los participantes infectados por SARS-CoV-2 (sábana; funda de almohada; edredón; paños (parte superior e inferior); paños de abajo; toalla de baño; y toalla de cara) se cambiaron y se tomaron muestras después de 1, 3, 5 y 7 días de uso para realizar pruebas de ARN del SARS-CoV-2. La ropa de cama estaba hecha de algodón o de una mezcla de algodón y poliéster. La ropa de cama recolectada en los días 1 y 3 se lavó o desinfectó utilizando uno de los cinco métodos asignados al azar: (1) lavado con agua del grifo (15–25 °C), (2) lavado con agua del grifo (15–25 °C) con un detergente para ropa de polioxietileno disponible comercialmente (Attack Zero®, Kao Corporation, Tokio, Japón), (3) lavado con agua del grifo (15–25 °C) con un suavizante disponible comercialmente (Humming®, Kao Corporation), (4) desinfección por inmersión durante 30 min en una solución de hipoclorito de sodio de 250 ppm, y (5) desinfección por inmersión durante 10 min en agua caliente (80 °C). La presencia de ARN del SARS-CoV-2 se probó en muestras de agua de enjuague.

Se recolectaron muestras de la ropa de cama utilizada por los participantes infectados por SARS-CoV-2 utilizando hisopos de plástico flocados estériles de 10 × 87 mm (Eiken Chemical, Japón). Antes de la recolección de la muestra, los hisopos se humedecieron con un medio de transporte viral que contenía suero bovino fetal (FBS) inactivado por calor al 2%, gentamicina 100 μg/ml, anfotericina B 50 μg/ml, tilosina 8 μg/ml y levofloxacina 10 μg/ml. (VTM; solución salina equilibrada de Hanks). Los hisopos humedecidos se insertaron en tubos de 21,9 × 93,6 mm que contenían 8 ml de VTM. Las muestras se recogieron limpiando el hisopo en tres direcciones sobre un área de 100 × 100 mm2 cerca de donde había estado la cara del participante en la sábana, la funda de la almohada y el edredón: en el cuello de la parte superior del camisón, cerca de los pies de la parte inferior del camisón y cerca del medio para las toallas de baño y faciales. Después de lavar o desinfectar la ropa de cama, se recogieron 500 ml de agua de enjuague en botellas esterilizadas y se almacenaron a 4 °C. Antes del análisis, las muestras se filtraron con un filtro de goteo para eliminar los residuos, y luego las muestras filtradas se pesaron y se añadió ácido poliacrílico al 5 % (PM 25 kDa) disuelto en NaOH 0,4 M hasta una concentración final del 0,13 %. Después de repetir la mezcla y dejar reposar a temperatura ambiente durante 30 minutos, las muestras se centrifugaron a 11.000 xg y se recogieron los sedimentos. Finalmente, los sobrenadantes se obtuvieron resuspendiendo los pellets en 2 mL de PBS (-) y centrifugando a 6000 rpm durante 3 min.

Para evaluar el riesgo de transmisión por gotitas y por el aire mientras las personas manipulaban ropa de cama contaminada con SARS-CoV-2, se recolectaron muestras de aire antes, durante o después de los cambios de ropa. Se colocó un dispositivo de muestra Sartorius MD8 Airscan (Sartorius AG, Göttingen, Alemania) a una altura de 100 cm y a 50 cm de la cama. Se utilizaron filtros de gelatina estériles (80 mm de diámetro; tamaño de poro de 3 μm, tasa de captura de fagos T3 99,94%; Sartorius AG) para filtrar 2000 litros de aire a un caudal de 50 litros/minuto. Los pacientes permanecieron en la habitación durante el cambio de ropa y mientras se tomaban muestras de aire. Después del muestreo de aire, el filtro de membrana de gelatina se fragmentó y se insertó en un tubo de centrifugación de 100 ml con 5 ml de VTM. El filtro se disolvió agitando a 37 °C durante 15 minutos y luego se almacenó a -80 °C hasta la extracción del ARN.

Para evaluar el riesgo potencial de transmisión por contacto mientras las personas manipulaban ropa de cama contaminada con SARS-CoV-2, se recogieron muestras de las superficies de su EPP inmediatamente después de cambiar la ropa de cama. Se recogieron cincuenta y dos muestras de cada elemento de EPP (mascarilla N95, gafas, bata superior y bata inferior) limpiando el hisopo en tres direcciones sobre un área de 50 × 50 mm2: en la superficie frontal de la mascarilla, en la superficie frontal de la gafas protectoras, cerca del cuello para la parte superior de la bata y cerca de los pies para la parte inferior de la bata.

Todas las muestras se transportaron al Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas (NIID) y se examinaron utilizando el método de PCR con transcriptasa inversa en tiempo real (rtRT) desarrollado por Shirato et al.16 Se extrajo ARN viral de muestras, incluidos hisopos nasofaríngeos, de lino y de EPP. , utilizando un kit de purificación de ácido nucleico MagMAX CORE (Thermo Fisher Scientific, Tokio, Japón) en el sistema de purificación KingFisher Flex (Thermo Fisher Scientific) según las instrucciones del fabricante: cada elución de ARN de 60 µl se preparó a partir de muestras de 200 µl. La mezcla de rtRT-PCR, incluido el conjunto de cebadores N2, se preparó utilizando un kit de PCR QuantiTect Probe (QIAGEN, Venlo, Países Bajos) en un volumen final de 20 µl. Esto comprendía 5 µl de ARN extraído, cebador directo 0,5 µM, cebador inverso 0,7 µM y sonda TaqMan 0,2 µM. La reacción se realizó utilizando un sistema LightCycler 480 (Roche, Basilea, Suiza) con transcripción inversa a 50 °C durante 30 min seguido de desnaturalización a 95 °C durante 15 min. A continuación, se realizaron 45 ciclos de amplificación utilizando un perfil de ciclado térmico de 95 °C durante 15 s y 60 °C durante 1 min. Los números de copias virales en muestras de pacientes se calcularon utilizando una curva estándar establecida por el NIID. El límite de detección de los valores del umbral del ciclo (Ct) se fijó en 40 según un informe de Buchan et al. y el protocolo NIID17.

Las muestras utilizadas para el aislamiento del virus se prepararon como material de inoculación que se había sometido a filtración estéril utilizando una unidad de filtro centrífuga (Ultrafree-MC, 0,22 μm; Merck Millipore, Burlington, MA, EE. UU.). Se inocularon células Vero E6/TMPRSS2 (5 % FBS DMEM) cultivadas en placas de 12 pocillos con 100 µl de la muestra y se cultivaron a 37 °C y 5 % de CO2 durante 7 días para comprobar el efecto citopático (CPE). Se transfirió un total de 100 µl de los sobrenadantes del primer cultivo a una nueva placa celular monocapa y se cultivó en las mismas condiciones descritas anteriormente. Después de tres pasajes en serie, juzgamos la positividad/negatividad mediante CPE.

Para los datos demográficos, las estadísticas resumidas se mostraron como medianas (rango intercuartílico o rango), distribuciones de frecuencia o proporciones. Los parámetros meteorológicos se mostraron como media (± desviación estándar). La diferencia en las proporciones de detección de ARN entre el alojamiento y el hospital se evaluó mediante la prueba exacta de Fisher. Los cambios longitudinales en las proporciones de detección de ARN se evaluaron con la prueba de Cochran-Armitage y un valor de p inferior a 0,05 se consideró estadísticamente significativo. Se utilizó un intervalo de confianza del 95% para determinar si existían diferencias estadísticamente significativas en los porcentajes de muestras positivas entre los diferentes grupos de métodos de limpieza y desinfección. Todos los análisis estadísticos se realizaron con SAS V.9.4 (SAS Institute, Cary, NC, EE. UU.).

Explicamos los riesgos y beneficios del estudio a todos los participantes y obtuvimos su consentimiento informado. Todos los métodos se realizaron de acuerdo con las directrices y regulaciones pertinentes, y este estudio fue aprobado por las Juntas de Revisión Institucional del NIID (aprobación No. 1167) y la Universidad Internacional de Salud y Bienestar (aprobación No. 20-Nr-066).

Entre los 23 pacientes inscritos, 13 (siete del hospital y seis del centro de alojamiento) dieron positivo para el ARN del SARS-CoV-2 el día 1 o el día 3 y se incluyeron en el análisis (Fig. 1). Entre estos 13 participantes, siete eran mujeres (54%) y la mediana de edad fue de 46 (rango intercuartil 33-55) años (Tabla 1). Siete participantes, incluido uno en el alojamiento (54%), presentaron síntomas durante el período del estudio. La mediana de su intervalo desde el inicio de los síntomas hasta la hospitalización o el ingreso al centro de alojamiento fue de 1 día (rango, 0 a 3 días). Todos los participantes sintomáticos tenían síntomas leves y ninguno tenía neumonía moderada o grave según la clasificación de los Institutos Nacionales de Salud18. Tanto en el hospital como en el alojamiento las habitaciones estaban continuamente climatizadas. La temperatura y la humedad se midieron una vez al día a las 12:00 horas, cuyos valores medios (± desviación estándar) fueron 24,2 ± 1,2 °C y 47,8 ± 14,2%, respectivamente. Durante el período del estudio, se evaluaron mutuamente las condiciones de salud de los investigadores (trabajadores de la salud) que participaron en el estudio, que incluyó la recolección de muestras, pero no se revelaron síntomas.

Inscripción, asignación a métodos de limpieza o desinfección y exclusión de los participantes en el estudio.

En total, se analizaron 700 muestras para detectar la presencia de ARN del SARS-CoV-2: 362 de ropa de cama, 26 de agua de enjuague, 104 de aire y 208 de EPI. Se detectó ARN del SARS-CoV-2 en 52 de las 362 prendas de lino analizadas (14 %, Tabla 2). En ambas instalaciones se detectó ARN del SARS-CoV-2 en todo tipo de ropa de cama. La frecuencia de detección osciló entre el 12 y el 21% para ropa de cama (sábana, funda de almohada, edredón y paños (superior, inferior)) y entre el 6 y el 8% para toallas de baño y faciales. No se observaron diferencias significativas en las proporciones de detección con respecto al tipo de ropa de cama (exacta de Fisher, sábanas p = 0,31, funda de almohada p = 0,72, funda nórdica p = 0,67, ropa superior p = 0,73, ropa inferior p = 1,00, ropa de baño). toalla p = 1,00, toalla facial p = 1,00), o ropa de cama general (p = 0,65) entre residentes del centro y pacientes hospitalizados. Las proporciones de detección de ARN disminuyeron significativamente con el tiempo en el hospital (Cochran-Armitage, p <0,01), aunque no en el centro de alojamiento (p = 0,25) ni en general (p = 0,19).

No se detectó ARN del SARS-CoV-2 en el agua de enjuague después de lavar con agua del grifo, desinfectar con hipoclorito de sodio o desinfectar con agua a 80 °C (Tabla 3). Sin embargo, se detectó SARS-CoV-2 en una de cinco muestras (20 %; valor Ct, 40) después de lavar con detergente para ropa (polioxietileno) y en una de seis muestras (17 %; valor Ct, 37) después de lavar con tela. suavizante. No se aislaron viriones en ninguna de las muestras.

La Tabla 4 muestra los resultados de las pruebas sobre las muestras de aire recolectadas antes y durante o después del cambio de ropa de cama. Se detectó ARN del SARS-CoV-2 en 16 muestras, que se detectaron con mayor frecuencia durante o después del cambio de ropa de cama (10 muestras, 18%) que antes del cambio de ropa de cama (seis muestras, 11%); sin embargo, la diferencia no fue estadísticamente significativa (p = 0,42). El ARN del SARS-CoV-2 se detectó con mayor frecuencia en el alojamiento (17% antes y 29% después del cambio de ropa de cama) que en el hospital (7% antes y 11% después del cambio de ropa de cama); sin embargo, la diferencia tampoco fue estadísticamente significativa (p = 0,06). En cinco casos, la muestra de aire antes del cambio de ropa fue negativa, pero se volvió positiva durante o después. Todos los valores de Ct fueron ≥ 36 y no se aislaron viriones después de tres pases seriados. Se detectó ARN del SARS-CoV-2 en seis de las 208 muestras de EPP, cinco de la bata inferior (10 %) y una de la bata superior (2 %; Tabla 5). No se detectó ARN viral en máscaras ni gafas N95. Los valores de Ct de las seis muestras que dieron positivo para el ARN del SARS-CoV-2 fueron ≥ 37 y no se aislaron viriones después de tres pases en serie.

Este estudio monitoreó la presencia de ARN del SARS-CoV-2 en la ropa de cama de personas infectadas con SARS-CoV-2 antes y después del lavado, en el aire durante la recolección de la ropa de cama y en el EPP de los trabajadores que cambiaban la ropa de cama. El objetivo del estudio fue comprender mejor el riesgo potencial de infección entre las personas que cambian la ropa de cama utilizada por personas infectadas con SARS-CoV-2 y determinar si el virus permanece en la ropa de cama después del lavado y/o desinfección. Se detectó ARN del SARS-CoV-2 en la ropa de cama utilizada por personas infectadas con el SARS-CoV-2 y en las batas de los trabajadores que cambiaban la ropa de cama. La detección de ARN del SARS-CoV-2 aumentó desde el inicio durante o después del cambio de ropa de cama, pero todas tenían un valor de Ct alto (> 36), lo que indica que, aunque es posible la transmisión del SARS-CoV-2 por gotitas o por el aire durante el cambio de ropa de cama, la el riesgo es bajo. El hallazgo de que no se detectó ARN del SARS-CoV-2 en las máscaras N95 o las gafas protectoras que usaban las personas que cambiaban la ropa de cama, y ​​los resultados negativos en las pruebas de aislamiento del virus, respaldan esta hipótesis. Se detectó una cantidad mínima de ARN de SARS-CoV-2 en el agua de enjuague después de lavar la ropa de cama con detergente o suavizante. Las muestras tenían valores de Ct elevados y resultados negativos en las pruebas de aislamiento del virus, lo que indicaba que el riesgo de infección por SARS-CoV-2 por la manipulación de ropa de cama lavada sería bajo.

Varios estudios han examinado la relación entre los valores de Ct y la transmisibilidad. Según informes anteriores, es difícil cultivar virus a partir de muestras con valores de Ct > 3519,20,21. Además, los estudios que discuten la interpretación clínica de valores altos de Ct han expresado opiniones negativas al evaluar la transmisibilidad del ARN viral detectado con valores de Ct en los 30 s22 altos. En nuestro estudio, se detectó ARN del SARS-CoV-2 en la ropa de cama utilizada por personas infectadas por el SARS-CoV-2, en el EPI usado por las personas que habían cambiado la ropa de cama, en muestras de aire donde se cambió la ropa de cama y en el enjuague con agua después del lavado de ropa de cama. Los valores de Ct de la ropa de cama contaminada oscilaron entre 33 y 40. Por lo tanto, aunque podría existir riesgo de transmisión por contacto a partir de ropa de cama contaminada, es poco probable que el ARN del SARS-CoV-2 se haya detectado en los EPI, en el aire y en la ropa de cama lavada. en nuestro estudio contribuiría a la transmisión del SARS-CoV-2.

Los resultados de nuestro estudio confirmaron la presencia de SARS-CoV-2 en la ropa de cama utilizada por personas infectadas con SARS-CoV-2. Sin embargo, no hubo diferencias en la frecuencia de detección entre el hospital y el alojamiento, lo que sugiere que se produce un nivel similar de contaminación de la ropa de cama independientemente de la gravedad de la enfermedad. Estudios anteriores han informado que la diseminación viral no difiere significativamente entre personas asintomáticas y sintomáticas23,24 y que los riesgos de transmisión de pacientes asintomáticos/presintomáticos y sintomáticos son similares25,26.

La frecuencia de la contaminación de la ropa de cama a lo largo del tiempo confirmó una tendencia a la baja sólo en el hospital, pero no en el centro de alojamiento. Una posible razón de la falta de una tendencia clara en las instalaciones de alojamiento es que la diseminación viral en pacientes con COVID-19 es mayor desde 2 días antes del inicio de los síntomas hasta el día después del inicio25,27,28. Por lo tanto, como el centro de alojamiento albergaba en su mayoría a personas asintomáticas, es posible que haya habido una gran variación en la duración desde la infección. En nuestro estudio, el ARN viral con valores de Ct de hasta 30 segundos, lo que sugiere infecciosidad, continuó en la ropa de cama utilizada por personas infectadas con SARS-CoV-2 hasta 5 días después de la inscripción en el estudio. El período medio de eliminación del ARN viral en pacientes con COVID-19 es de 17 días después de su aparición en el tracto respiratorio superior3, y el SARS-CoV-2 que se adhiere a las superficies ambientales sigue siendo infeccioso durante aproximadamente 3 días4,5. Aunque no evaluamos completamente los cambios en las proporciones de detección de ARN a lo largo del tiempo, o la atenuación de la infecciosidad, nuestros resultados sugieren que se necesita precaución al manipular la ropa de cama utilizada por pacientes con COVID-19 al menos dentro de los 5 días posteriores al inicio de los síntomas o la recolección de muestras.

Los resultados del muestreo de aire confirmaron que las partículas virales flotan en el aire antes y después de cambiar la ropa de cama. Como se informó que existe ARN del SARS-CoV-2 en el aire de hospitales y entornos urbanos alrededor de pacientes con COVID-1920,29,30,31, asumimos que el ARN del SARS-CoV-2 se detectaría antes de cambiar la ropa de cama. Aunque no se observaron diferencias estadísticamente significativas, la frecuencia de detección del ARN del SARS-CoV-2 fue mayor durante o después del cambio de ropa de cama que antes. Esto sugiere la posibilidad de que la manipulación de la ropa de cama provocara que partículas virales se dispersaran en el aire. No obstante, los valores de Ct de todos los ARN virales detectados fueron ≥ 36 y los resultados de la prueba de aislamiento del virus fueron negativos. Además, no se detectó ARN viral en N95 ni en gafas. Por lo tanto, el riesgo de transmisión por gotitas o por vía aérea al inhalar SARS-CoV-2 mientras se cambia la ropa de cama contaminada puede ser bajo.

Al comparar los métodos de lavado y desinfección, se detectó ARN del SARS-CoV-2 en dos muestras de agua de enjuague después del lavado con detergente para ropa (polioxietileno) y suavizante de telas (amonio grado 4). Se sugirió que los virus son inactivados por los tensioactivos de los detergentes o suavizantes16. Sobre la base del hallazgo de que todos los valores de Ct eran altos (> 37) y no se detectó ARN viral en el agua de enjuague después del lavado, concluimos que el riesgo de transmisión del SARS-CoV-2 a través de la ropa de cama lavada es bajo. Además, si las personas practican una higiene de manos adecuada y utilizan EPP y se garantiza que la ropa de cama se recupere y transporte de manera segura, parece innecesario recomendar los procedimientos de desinfección adoptados actualmente por muchos países12,13,14,15.

Este estudio tuvo varias limitaciones. En primer lugar, solo examinamos a pacientes asintomáticos y no se incluyeron pacientes sintomáticos con síntomas leves del tracto respiratorio superior y aquellos con enfermedad grave. El período de diseminación viral no difiere mucho entre personas con enfermedad leve y aquellas con enfermedad moderada o grave23,28; sin embargo, los procedimientos médicos que pueden propagar el virus, como la succión, se realizan con mayor frecuencia en pacientes con neumonía moderada o grave. Se justifican estudios sobre el grado de contaminación de la ropa de cama durante el cuidado de pacientes con enfermedades moderadas o graves. En segundo lugar, los valores de Ct para los participantes asintomáticos fueron ligeramente más altos que los de los participantes sintomáticos, y aunque el momento exacto de la exposición no estaba claro, los participantes asintomáticos pueden tardar más tiempo entre la exposición y la identificación (prueba) que los participantes sintomáticos. Sin embargo, confirmamos que la ropa de cama estaba contaminada por el ARN del virus y que la influencia de los diferentes niveles de eliminación viral de cada participante fue limitada. En tercer lugar, aunque este estudio fue diseñado como un ensayo controlado aleatorio para comparar métodos de lavado y desinfección, no fue un ensayo clínico con un diseño de verificación en el que el poder y el tamaño de la muestra se establecieran de antemano. Cuarto, solo probamos un detergente y un suavizante. Los detergentes y suavizantes para ropa disponibles comercialmente varían ampliamente en ingredientes y formas, lo que dificulta la elección de agentes y métodos de limpieza representativos. En quinto lugar, debido a que los participantes permanecieron en la habitación cuando se cambiaba la ropa de cama, el muestreo de aire podría haber detectado partículas virales en las exhalaciones de los pacientes. Sin embargo, la proporción de detección aumentó después de la manipulación de la ropa de cama, lo que indica que la ropa de cama se dispersó con partículas de virus. En sexto lugar, solo se tomó una muestra de la superficie de las máscaras N95 de los trabajadores y no se midió el ARN viral dentro de las máscaras. Finalmente, los hallazgos de nuestro estudio se basaron en la variante salvaje y pueden no ser aplicables a otras variantes virales, aunque la variación en la estabilidad viral ambiental entre variantes parece ser baja32.

En conclusión, este estudio encontró que el ARN del SARS-CoV-2 en la ropa de cama utilizada por personas infectadas con el SARS-CoV-2 podría carecer de virus viables o ARN viral con un valor de Ct bajo después del lavado con agua, detergente o suavizante. No se puede descartar por completo la posibilidad de transmisión aérea y de contacto del SARS-CoV-2 durante o después de la manipulación de la ropa de cama, pero la transmisión por ambas rutas parece ser menos probable. Los tipos de EPP que deben usar los trabajadores de la salud dependen de la aceptabilidad del riesgo de transmisión del SARS-CoV-2, y nuestros hallazgos ayudan a proporcionar información útil para evaluar este riesgo (Información complementaria).

Los datos recopilados en este estudio, incluidos los datos de los participantes no identificados y el diccionario de datos, están disponibles para los investigadores a través del autor correspondiente, el Dr. Takuya Yamagishi, previa solicitud razonable. Estos datos estarán disponibles por un período de 6 meses a 3 años después de su publicación. Las solicitudes de datos requieren una propuesta metodológicamente sólida, un acuerdo de acceso a los datos y la aprobación del comité de ética local.

Organización Mundial de la Salud. Actualización epidemiológica semanal de COVID-19. https://reliefweb.int/sites/reliefweb.int/files/resources/20220106_Weekly_Epi_Update_73.pdf. Consultado el 6 de enero de 2022.

Gandhi, RT, Lynch, JB & Del Rio, C. Covid-19 leve o moderado. N. inglés. J. Med. 383, 1757-1766 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Cevik, M. y col. Dinámica de la carga viral de SARS-CoV-2, SARS-CoV y MERS-CoV, duración de la diseminación viral e infecciosidad: una revisión sistemática y un metanálisis. Lancet Microbe 2, e13 – e22 (2021).

Artículo CAS Google Scholar

van Doremalen, N. et al. Estabilidad del aerosol y de la superficie del SARS-CoV-2 en comparación con el SARS-CoV-1. N. inglés. J. Med. 382, 1564-1567 (2020).

Artículo de Google Scholar

Chin, AWH y cols. Estabilidad del SARS-CoV-2 en diferentes condiciones ambientales. Lancet Microbe 1, e10 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Kurosu, H. y col. Posible transmisión por contacto del SARS-CoV-2 en entornos sanitarios en Japón, 2020-2021. Infectar. Hospital de Control. Epidemiol. 20, 1-12 (2021).

Artículo de Google Scholar

Marqués, M. et al. Contaminación de superficies inertes por SARS-CoV-2: persistencia, estabilidad e infectividad. Una revisión. Res. Medio Ambiente. 193, 110559. https://doi.org/10.1016/j.envres.2020.110559 (2021).

Artículo CAS PubMed Google Scholar

Yamagishi, T. y col. Muestreo ambiental para el síndrome respiratorio agudo severo coronavirus 2 durante un brote de COVID-19 en el crucero Diamond Princess. J. Infectar. Dis. 222, 1098–1102 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Jiang, FC y col. Detección de ARN del coronavirus 2 del síndrome respiratorio agudo grave en superficies de salas de cuarentena. Emergente. Infectar. Dis. 26, 2162–2164 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Luo, L. y col. Contaminación del aire y de superficies en entornos no sanitarios entre 641 muestras ambientales de 39 casos de COVID-19. PLoS Negl. tropo. Dis. 14, e0008570 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Piana, A. et al. Monitoreo de los riesgos de transmisión de COVID-19 mediante el rastreo cuantitativo de gotas por PCR en tiempo real en entornos hospitalarios y residenciales. mSphere 6, e01070-e1120 (2021).

Artículo CAS Google Scholar

Organización Mundial de la Salud. Atención domiciliaria a pacientes con sospecha o confirmación de COVID-19 y manejo de sus contactos. Guía interina. (2020).

Centro para el Control y la Prevención de Enfermedades. COVID-19: Limpieza y desinfección de sus instalaciones. https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/community/disinfecting-building-facility.html. Consultado el 15 de noviembre de 2021.

Centro para el Control y la Prevención de Enfermedades de EE. UU. COVID-19: Limpieza y desinfección de tu hogar. https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/prevent-getting-sick/disinfecting-your-home.html. Consultado el 17 de junio de 2021.

Salud pública Inglaterra Reino Unido. Orientación COVID-19: Limpieza en entornos no sanitarios fuera del hogar. https://www.gov.uk/government/publications/covid-19-decontamination-in-non-healthcare-settings/covid-19-decontamination-in-non-healthcare-settings. Consultado el 16 de octubre de 2020.

Instituto Nacional de Tecnología y Evaluación, Japón. Informe final sobre la evaluación de la eficacia de sustancias desinfectantes alternativas al alcohol para su uso contra el síndrome respiratorio agudo severo coronavirus 2 (SARS-CoV-2). https://www.nite.go.jp/data/000115863.pdf.

Shirato, K. y col. Desarrollo de métodos de diagnóstico genético para la detección del nuevo coronavirus 2019 (nCoV-2019) en Japón. Japón. J. Infectar. Dis. 73, 304–307 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Institutos Nacionales de Salud de EE. UU. Pautas de tratamiento de la enfermedad por coronavirus 2019 (COVID-19). https://files.covid19treatmentguidelines.nih.gov/guidelines/covid19treatmentguidelines.pdf. Consultado el 19 de enero de 2022.

Kim, MC y cols. Duración del SARS-CoV-2 cultivable en pacientes hospitalizados con Covid-19. N. inglés. J. Med. 384, 671–673 (2021).

Artículo de Google Scholar

Zhou, J. y col. Investigación de la contaminación de la superficie y del aire por el virus del síndrome respiratorio agudo grave (SARS-CoV-2) en un entorno de atención sanitaria aguda durante el pico de la pandemia de enfermedades por coronavirus 2019 (COVID-19) en Londres. Clínico. Infectar. Dis. 73, e1870-e1877 (2020).

Artículo de Google Scholar

Singanayagam, A. et al. Duración de la infecciosidad y correlación con los valores umbral del ciclo de RT-PCR en casos de COVID-19, Inglaterra, enero a mayo de 2020. Euro Surveill. 25, 32794447 (2020).

Artículo de Google Scholar

Buchan, BW y cols. La distribución de los valores umbral del ciclo de PCR del SARS-CoV-2 proporciona información práctica sobre la sensibilidad general y específica del objetivo entre los pacientes sintomáticos. Soy. J.Clin. Patol. 154, 479–485 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Lee, S. y col. Curso clínico y diseminación viral molecular entre pacientes asintomáticos y sintomáticos con infección por SARS-CoV-2 en un centro de tratamiento comunitario en la República de Corea. Pasante JAMA. Medicina. 180, 1447-1452 (2020).

Artículo ADS CAS Google Scholar

Zou, L. y col. Carga viral del SARS-CoV-2 en muestras de las vías respiratorias superiores de pacientes infectados. N. inglés. J. Med. 382, 1177-1179 (2020).

Artículo de Google Scholar

Johansson, MA y cols. Transmisión de SARS-CoV-2 de personas sin síntomas de COVID-19. Red JAMA. Abierto 4, e2035057 (2021).

Artículo de Google Scholar

Él, X. et al. Dinámica temporal en la diseminación viral y transmisibilidad de COVID-19. Nat. Medicina. 26, 672–675 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Kim, KS y cols. Un modelo cuantitativo utilizado para comparar la dinámica interna del SARS-CoV-2, MERS-CoV y SARS-CoV proporciona información sobre la patogénesis y el tratamiento del SARS-CoV-2. PLoS Biol. 19, e3001128 (2021).

Artículo CAS Google Scholar

Para, KK et al. Perfiles temporales de carga viral en muestras de saliva orofaríngea posterior y respuestas de anticuerpos séricos durante la infección por SARS-CoV-2: un estudio de cohorte observacional. Infección por lanceta. Dis. 20, 565–574 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Chia, PY et al. Detección de contaminación del aire y superficies por SARS-CoV-2 en habitaciones hospitalarias de pacientes infectados. Nat. Comunitario. 11, 2800 (2020).

Artículo ADS CAS Google Scholar

Moreno, T. et al. Seguimiento del ARN del SARS-CoV-2 en la superficie y en el aire dentro de autobuses públicos y trenes subterráneos. Reinar. En t. 147, 106326 (2021).

Artículo CAS Google Scholar

Dumont-Leblond, N. et al. Baja incidencia de SARS-CoV-2 en el aire en habitaciones de hospitales de cuidados intensivos con ventilación optimizada. Emergente. Los microbios infectan. 9, 2597–2605 (2020).

Artículo CAS Google Scholar

Meister, TL y cols. Perfiles comparables de estabilidad ambiental y desinfección de las variantes de preocupación B.1.1.7 y B.1.351 del SARS-CoV-2 que circulan actualmente. J. Infectar. Dis. 224, 420–424 (2021).

Artículo CAS Google Scholar

Descargar referencias

Los autores agradecen a todo el personal de la Universidad Internacional de Salud y Bienestar del Hospital Narita, el Ministerio de Salud, Trabajo y Bienestar de Japón y el Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas de Japón. Los autores desean agradecer a Enago (www.enago.jp) por la revisión del manuscrito y el apoyo en la edición.

Este estudio fue financiado por una subvención del Ministerio de Salud, Trabajo y Bienestar Social de Japón (Subvenciones Nos. 20CA2036, 21LA1006). La fuente de financiación solo proporcionó apoyo financiero y no participó en la implementación, publicación u otros aspectos de este estudio.

Escuela de Graduados en Medicina, Universidad Internacional de Salud y Bienestar, 4-1-26, Akasaka, Minato-ku, Tokio, 107-8402, Japón

Retsu Fujita y Masataro Norizuki

Centro de Investigación de Resistencia a los Antimicrobianos, Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas, 1-23-1 Toyama, Shinjuku, Tokio, 162-8640, Japón

Hitomi Kurosu, Motoyuki Sugai y Takuya Yamagishi

Oficina de Cooperación Sanitaria Internacional, Centro Nacional para la Salud y la Medicina Globales, 1-21-1 Toyama, Shinjuku, Tokio, 162-8655, Japón

Masataro Norizuki

Departamento de Prevención y Control de Infecciones, Saiseikai Yokohama City Eastern Hospital, 3-6-1 Shimosueyoshi, Tsurumiku, Yokohama, Kanagawa, 230-8765, Japón

Takayuki Ohishi

Departamento de Gestión de Bioseguridad, Banco de Patógenos y Animales de Laboratorio, Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas, 1-23-1 Toyama, Shinjuku, Tokio, 162-8640, Japón

Aya Zamoto-Niikura, Masaaki Iwaki, Keiko Mochida, Hirotaka Takagi, Toshihiko Harada y Ken-Ichi Hanaki

Universidad Internacional de Salud y Bienestar Hospital Narita, 852 Hatakeda, Narita, Chiba, 286-8520, Japón

Kenji Tsushima y Tetsuya Matsumoto

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

RF: conceptualización, curación de datos y redacción: borrador original. HK: conceptualización, curación de datos. MN: conceptualización, curación de datos. PARA: conceptualización, curación de datos. AZ-N.: trabajo de laboratorio. MI: trabajo de laboratorio. KM: trabajo de laboratorio. HT: trabajo de laboratorio. TH: trabajo de laboratorio. KT: trabajo de laboratorio. TM: supervisión. Escritura: revisión y edición. K.-IH: conceptualización, trabajo de laboratorio. MS: supervisión. Escritura: revisión y edición. TY: supervisión, conceptualización, curación de datos, recursos, redacción: revisión y edición.

Correspondencia a Takuya Yamagishi.

Los autores declaran no tener conflictos de intereses.

Springer Nature se mantiene neutral con respecto a reclamos jurisdiccionales en mapas publicados y afiliaciones institucionales.

Acceso Abierto Este artículo está bajo una Licencia Internacional Creative Commons Attribution 4.0, que permite el uso, compartir, adaptación, distribución y reproducción en cualquier medio o formato, siempre y cuando se dé el crédito apropiado al autor(es) original(es) y a la fuente. proporcione un enlace a la licencia Creative Commons e indique si se realizaron cambios. Las imágenes u otro material de terceros en este artículo están incluidos en la licencia Creative Commons del artículo, a menos que se indique lo contrario en una línea de crédito al material. Si el material no está incluido en la licencia Creative Commons del artículo y su uso previsto no está permitido por la normativa legal o excede el uso permitido, deberá obtener permiso directamente del titular de los derechos de autor. Para ver una copia de esta licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.

Reimpresiones y permisos

Fujita, R., Kurosu, H., Norizuki, M. et al. Riesgo potencial de infección por SARS-CoV-2 entre las personas que manipulan la ropa de cama utilizada por pacientes con COVID-19 antes y después del lavado. Informe científico 12, 14994 (2022). https://doi.org/10.1038/s41598-022-18945-8

Descargar cita

Recibido: 04 de marzo de 2022

Aceptado: 22 de agosto de 2022

Publicado: 02 de septiembre de 2022

DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-022-18945-8

Cualquier persona con la que compartas el siguiente enlace podrá leer este contenido:

Lo sentimos, actualmente no hay un enlace para compartir disponible para este artículo.

Proporcionado por la iniciativa de intercambio de contenidos Springer Nature SharedIt

Al enviar un comentario, acepta cumplir con nuestros Términos y pautas de la comunidad. Si encuentra algo abusivo o que no cumple con nuestros términos o pautas, márquelo como inapropiado.